Efecto de diferentes proporciones de Tagetes minuta y Glycine max sobre Meloidogyne incognita

Autores/as

  • Susana A. Suárez Departamento de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Río Cuarto. Río Cuarto, Argentina.
  • Alejandra Gil Departamento de Producción Vegetal, Facultad de Agronomía, Universidad de Buenos Aires. Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.
  • Elba B. de la Fuente Departamento de Producción Vegetal, Facultad de Agronomía, Universidad de Buenos Aires. Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.
  • María del C. Tordable Departamento de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Río Cuarto. Río Cuarto, Argentina.
  • Claudio M. Ghersa IFEVA/CONICET, Facultad de Agronomía, Universidad de Buenos Aires. Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.

DOI:

https://doi.org/10.25260/EA.17.27.2.0.490

Resumen

Se estudió la infestación de raíces por Meloidogyne incognita (Kofoid and White) Chitwood, en mezclas de plantas de Glycine max (L.) Merr. y Tagetes minuta L. en distintas proporciones, por medio de un experimento diseñado para probar cómo huéspedes en diferentes proporciones modifican la reproducción de la primera generación y la densidad de la segunda generación del nematodo. En ambos huéspedes se evaluó la densidad de agallas radicales, sitios de alimentación, reacciones histológicas y número de larvas de la segunda generación de M. incognita. La densidad de agallas fue mayor en los tratamientos donde las plantas de G. max se encontraban en más de 50%. En raíces de T. minuta se encontraron sitios de alimentación no funcionales y las larvas en estos sitios no alcanzaron la etapa reproductiva. La reducción de la densidad de las larvas en el suelo fue proporcional a las cantidades de T. minuta en la mezcla. Estos datos indican que T. minuta infectado por nematodos actúa como una "planta trampa" debido a la captura de algunos individuos, muchos de los cuales nunca alcanzan la madurez sexual, y por la reducción de la densidad de segunda generación de M. incognita.

https://doi.org/10.25260/EA.17.27.2.0.490

Citas

Baayen, R. P., G. B. Oullette, and D. Rioux. 1996. Compartmentalization of decay in carnations resistant to Fusarium oxysporum f. sp. dianthi. Phytopathology 86(10):1018-1031.

Baker, K. R. 1993. Resistance / tolerance and related concepts / terminology in plant nematology. Plant Disease 77(2):111-113.

Berkelmans, R., H. Ferris, M. Tenuta, and A. H. C. van Bruggen. 2003. Effects of long-term crop management on nematode trophic levels other than plant feeders disappear after 1 year of disruptive soil management. Applied Soil Ecology 23:223-235.

Bezemer, T. M., G. B. De Deyn, T. M. Bossinga, N. M. van Dam, J. A. Harvey, and W. H. Van der Putten. 2005. Soil community composition drives aboveground plant-herbivore, parasitoid interactions. Ecology Letters 8:652-661.

De Moraes, C. M., W. J. Lewis, P. W. Paré, H. T. Alborn, and J. H. Tumlinson. 1998. Herbivore-infested plants selectively attract parasitoids. Nature 393:570-573.

Doucet, M. E. 1999. Nematodos del suelo asociados con vegetales en la República Argentina. Academia Nacional de Agronomía y Veterinaria, Series 24. Buenos Aires, Argentina. Pp. 259.

Doucet, M. E., S. A. Suárez, and E. Lorenzo. 2000. Alteraciones causadas por una población de nematodo fitófago del género Meloidogyne en un cultivar de soja, proveniente de Córdoba, Argentina. Kurtziana 28(2):221-228.

Dropkin, V. H., and P. E. Nelson. 1960. The histopathology of root-knot nematode infections in soybeans. Phytopathology 50:442-449.

de la Fuente, E. B., S. A. Suárez, A. Lenardis, and S. L. Poggio. 2014. Intercropping sunflower and soybean in intensive farming systems: evaluating yield advantage and effect on weed and insect assemblages. NJAS, Wageningen Journal of Life Sciences. Pp. 47-52.

de la Fuente, E. B., A. Gil, S. A. Suárez, C. M. Morvillo, and F. H. Oreja. 2011. Interacciones entre el cultivo de soja y los organismos que lo acompañan: efectos del manejo. Pp. 143-148 en O. S. Correas, E. B. de la Fuente, M. A. Carmona, A. G. Kantolic, and R. S. Lavado (compiladores). Soja: investigación científico-técnica desarrollada en INBA (CONICET/FAUBA) y en la Facultad de Agronomía de la UBA. Editorial Facultad de Agronomía (UBA).

Gil, A., C. M. Ghersa, and S. Perelman. 2002. Root thiophenes in Tagetes minuta L. accessions from Argentina: genetic and environmental contribution to changes in concentration and composition. Biochemical Systematics and Ecology 30:1-13.

Gilli, J. R., D. Croatto, H. Baigorri, and L. Gadbán. 2003. Resistencia genética en genotipos comerciales de soja frente al nematodo de la agalla Meloidogyne spp. Córdoba (Argentina). Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria, Marcos Juárez, Argentina.

Goldberg, D. E. 1999. Components of resource competition in plant communities. Pp. 27-49 en D. Tilman and J. H. Grace (eds.). Perspectives on plant competition. Academic Press Inc.

Grover, J. P., and R. D. Holt. 1997. Plants in trophic webs. Pp. 556-567 en M. J. Crawley (ed.). Plant ecology. Blackwell Sicence Ltd., Oxford, USA.

Hooks, C. R. R., K-H. Wang, A. Ploeg, and R. McSorley. 2010. Using marigold (Tagetes spp.) as a cover crop to protect crops from plant-parasitic nematodes. Applied Soil Ecology 46:307-320.

Jacobs, J. J. M. R., A. Engelberts, A. F. Croes, and G. J. Wullems. 1994. Thiophene synthesis and distribution in young developing plants of Tagetes patula and Tagetes erecta. Journal Experimental Botany 45:1459-1466.

Jenkins, W. R. 1964. A rapid centrifugal-flotation technique method for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter 18:602.

Jepson, S. D. 1987. Identification of root-knot nematodes (Meloidogyne species). Farnham Royal, CAB International. London, UK. Pp. 265.

Lorenzo, E., M. E. Doucet, S. A. Suárez, and P. Lax. 2004. Histopathology of Melilotus albus roots parasitized by Meloidogyne javanica. Nematología Brasileira 28(1):111-114.

Montgomery, D. C. 1991. Diseño y análisis de experimentos. Grupo editorial Iberoamérica, Bs.As., Argentina.

O’Brien, T. P., and M. E. Mc Cully. 1981. The study of plant structure: principles and selected methods. Termacarphi Pty Ltd. Melbourne, Australia. Pp. 339.

Piedra Buena, A., M. Á. Diez-Rojo, J. A. López-Pérez, L. Robertson, M. Escuer, and A. Bello. 2008. Screening of Tagetes patula L. on different populations of Meloidogyne. Crop Protection 27:96-100.

Ploeg, A. T. 1999. Greenhouse studies on the effect of marigold (Tagetes spp.) on four Meloidogyne species. Journal Nematology 31(1):62-69.

Ploeg, A. T. 2002. Effects of selected marigold varieties on root-knot nematodes and tomato and melon yields. Plant Disease 86(5):505-508.

Ploeg, A. T., and P. C. Marüs. 1999. Effect of temperature on suppression of Meloidogyne incognita by Tagetes cultivars. Supplement to the Journal Nematology 31:709-714.

Radosevich, S., J. Holt, and C. M. Ghersa. 2007. Plant-plant associations. 6. Pp. 183-258 en S. Radosevich, J. Holt and C. M. Ghersa (eds.). Ecology of weeds and invasive plants. Relationship to agriculture and natural resources management. John Wiley & Sons, Inc. New Jersey, USA.

Siddiqui, M. A., and M. N. Mashkoor-Alma. 1988. Control of plant parasitic nematodes by Tagetes tenuifolia. Revue de Nématologie 11:369-370.

Simon, P. M., L. Katinas, and A. M. Arambarri. 2002. Secretory structures in Tagetes minuta (Asteraceae, Helenieae). Boletín de la Asociación Argentina de Botánica 37(3-4):181-191.

Suárez, S. A., E. B. de la Fuente, A. Lenardis, A. Gil, M. E. Doucet, and C. M. Ghersa. 2015. Efecto de los factores de manejo agrícola del cultivo de soja sobre las malezas y su importancia sobre los grupos funcionales de nematodos edáficos en la Pampa Ondulada. Agronomía y Ambiente 35(1):71-81.

Stephen, H. T., J. Schroeder, and L. W. Murray. 2005. The role of weeds in nematode management. Weed Science 53:923-928.

Sütfeld, R. 1982. Distribution of thiophene derivatives in different organs of Tagetes patula seedings grown under various conditions. Planta 156:536-540.

Trudgill, D. L., and V. Blok. 2001. Apomictic, polyphagous root-knot nematodes: exceptionally successful and damaging biotrophic root pathogens. Annual Review of Phytopathology 39:53-77.

van Bruggen, A. H. C., and N. J. Grunwald. 1996. Test for risk assessment of root infection by plant pathogens. 49. Pp. 293-310 en J. W. Doran and A. J. Jones (eds.). Methods for assessing soil quality. Soil Science Society of America. Madison, USA.

Vasudevan, P., S. Kashyap, and S. Sharma. 1997. Tagetes: a multipurpose plant. Bioresource Technology 62:29-35.

Wang, K-H., C. R. Hooks, and A. Ploeg. 2007. Protecting crops from nematode pests: using Marigold as an alternative to chemical nematicides. Plant Disease 35:1-6.

Wrather, J. A., T. R. Anderson, D. M. Arsyad, Y. Tan, L. D. Ploper, A. Porta-Puglia, H. H. Ram, and J. T. Yorinori. 2001. Soybean disease loss estimates for the top ten soybean-producing countries in 1998. Canadian Journal Plant Pathology 23:115-121.

Yeates, G. W. 1999. Effects of plants on nematode community structure. Annual Review of Phytopathology 37:127-149.

Yeates, G. W., and T. Bongers. 1999. Nematode diversity in agroecosystems. Agriculture, Ecosystems and Environment 74:113-135.

Zacheo, G, and T Bleve-Zacheo. 1995. Plant-nematode interactions: histological, physiological and biochemical interactions. Pp. 321-353 en K. Kohmoto, U. S. Singh and R. P. Singh (eds.). Pathogenesis and host specificity in plant diseases. Histological, Biochemical, Genetic and molecular bases. Eukaryotes Pergamon, Elsevier Science Ltd. London, Great Britain.

Efecto de diferentes proporciones de Tagetes minuta y Glycine max sobre Meloidogyne incognita

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Publicado

2017-06-17

Cómo citar

Suárez, S. A., Gil, A., de la Fuente, E. B., Tordable, M. del C., & Ghersa, C. M. (2017). Efecto de diferentes proporciones de Tagetes minuta y Glycine max sobre Meloidogyne incognita. Ecología Austral, 27(2), 210–218. https://doi.org/10.25260/EA.17.27.2.0.490