Trichoderma en la Argentina: Estado del arte

Autores/as

  • Natalia S. Amerio Instituto de Biotecnología Misiones “Dra. María Ebe Reca” - InBioMis, Universidad Nacional de Misiones. CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas).
  • María L. Castrillo Instituto de Biotecnología Misiones “Dra. María Ebe Reca” - InBioMis, Universidad Nacional de Misiones. CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas).
  • Gustavo A. Bich Instituto de Biotecnología Misiones “Dra. María Ebe Reca” - InBioMis, Universidad Nacional de Misiones. CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas).
  • Pedro D. Zapata Instituto de Biotecnología Misiones “Dra. María Ebe Reca” - InBioMis, Universidad Nacional de Misiones. CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas).
  • Laura L. Villalba Instituto de Biotecnología Misiones “Dra. María Ebe Reca” - InBioMis, Universidad Nacional de Misiones.

DOI:

https://doi.org/10.25260/EA.20.30.1.0.945

Resumen

Las metodologías que se aplican para manejar los sistemas agrícolas y agroforestales tienen efectos notables en la producción de alimentos y en la conservación de la biodiversidad. Las enfermedades que causan los hongos fitopatógenos son uno de los problemas críticos en la agricultura argentina. A partir de la necesidad de encontrar mecanismos que eleven la productividad del campo, en los últimos años se intensificó la búsqueda de estrategias de control de enfermedades agrícolas que sean alternativas al control químico, buscando, además, disminuir los riesgos ambientales y sanitarios derivados de éste. El hongo Trichoderma es uno de los agentes que más se usan en los programas de control biológico como reguladores de hongos fitopatógenos. Esta revisión tiene como objetivo realizar una compilación de toda la información disponible respecto al estado del arte de Trichoderma como controlador biológico en la Argentina, con el fin de referenciar diferentes instituciones del país que centralizan a este hongo en sus investigaciones. Cerca de 70 grupos de universidades e institutos de investigación describieron aproximadamente diez especies diferentes de Trichoderma con capacidad antagonista, se estudiaron alrededor de 35 cultivos y 40 patógenos. La especie de Trichoderma más utilizada como agente de control biológico es Trichoderma harzianum, seguida por Trichoderma koningii y Trichoderma viride. Actualmente, en el mercado argentino existen cerca de 14 bioproductos cuyo principio activo son cepas de Trichoderma. Las crecientes iniciativas de las instituciones nacionales sobre estos estudios son básicas para el desarrollo de tecnologías innovadoras y para lograr una agricultura más productiva y ambientalmente sostenible en el país.

https://doi.org/10.25260/EA.20.30.1.0.945

Biografía del autor/a

Natalia S. Amerio, Instituto de Biotecnología Misiones “Dra. María Ebe Reca” - InBioMis, Universidad Nacional de Misiones. CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas).

Titulo de grado: Licenciada en genética, recibida de la Facultad de ciencias exactas, química y naturales, de la Universidad Nacional de Misiones.

Becaria doctoral de CONICET. En curso Doctorado en Ciencias Aplicada, área: Biotecnología. 

Citas

Abarca, M. R., M. R. Bragulat, G. Castellá, F. Accensi, and F. J. Cabañes. 2000. Hongos productores de micotoxinas emergentes. Revista Iberoamericana de Micología 17:S63-S68.

Agamez Ramos, E., R. Zapata Navarro, L. Oviedo Zumaque, and J. Barrera Voleth. 2008. Evaluación de sustratos y procesos de fermentación sólida para la producción de esporas de Trichoderma sp. Revista Colombiana de Biotecnología 10:23-34.

Aizen, M. A., L. A. Garibaldi, and M. Dondo. 2009. Expansión de la soja y diversidad de la agricultura argentina. Ecología Austral 19:45-54.

Altieri, M., and C. I. Nicholls. 2000. Agroecología. Teoría y práctica para una agricultura sustentable. Serie Textos Básicos para la Formación Ambiental. 1° Edición. Programa de las Naciones Unidas para el Medio Ambiente Red de Formación Ambiental para América Latina y el Caribe, Colonia Lomas de Virreyes, México D.F., México. Pp. 167-180.

Alvarado, P., J. J. Boiteux, C. Monardez, R. López Plantey, G. Lucero, and P. Pizzuolo. 2017. Actividad antimicrobiana de filtrados culturales de distintos aislados de Trichoderma sp. hacia Monilinia fructicola. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 361. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Barocio Ceja, N. B., L. F. Ceja Torres, J. L. Morales García, H. V. Silva Rojas, R. Flores Magallón, and S. Y. Ochoa Estrada. 2013. In vitro biocontrol of tomato pathogens using antagonists isolated from chicken-manure vermicompost. Phyton 82:15-22.

Bary, A. 1876. Researches into the nature of the potato-fungus, Phytophthora infestans. Journal of the Royal Agricultural Society of England 12:239-269.

Bary, A. 1884. Vergleichende Morphologie und Biologie der Pilze Mycetozoen und Bacterien. Wilhelm Engelmann Pp. 1-558. https://doi.org/10.5962/bhl.title.42380.

Benítez, T., A. M. Rincón, M. C. Limón, and A. C. Codón. 2004. Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. International Microbiology 7:249-260.

Berk, A. 1842. The Annals and Magazine of Natural History 6:359.

Bettiol, W. 2006. Productos alternativos para el manejo de enfermedades en cultivos comerciales. Fitosanidad 10:85-98.

Bettiol, W., M. A. Morandi, Z. V. Pinto, T. J. Paula Junior, E. B. Correa, A. B. Moura, C. M. Lucon, J. C. Costa, and J. L. 2012. Produtos comerciais à base de agentes de biocontrole de doenças de plantas. Embrapa Meio Ambiente, Jaguariuna, Jaguariúna, São Paulo, Brasil.

Bettiol, W., and R. Ghini. 2014. Proteção de plantas em sistemas agrícolas alternativos. Cadernos de Ciência y Tecnologia 17:61-70.

Burba, J. L., and C. R. Galmarini. 1994. Allium crop situation in Argentina. En I International Symposium on Edible Alliaceae 433:35-52. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1997.433.2.

Carluccio, C., M. Lenscak, M. Panelo, M. Colombo, S. Cáceres, N. Molina, and C. Pernuzzi. 2002. Desarrollo actual de los cultivos protegidos en la República Argentina. Situación de la Agroplasticultura en Países Iberoamericanos. Tercera Reunión de Coordinación en Caracas, Venezuela. Cyted, Almería, España. Septiembre. Pp. 30-71.

Chaverri, P., F. B. Rocha, W. Jaklitsch, R. Gazis, T. Degenkolb, and G. J. Samuels. 2015. Systematics of the Trichoderma harzianum species complex and the re-identification of commercial biocontrol strains. Mycologia 107:558-590. https://doi.org/10.3852/14-147.

Colombo, M. H., T. Lattar, V. Obregón, N. Cardozo, J. Monteros, and C. Mónaco. 2011. Acción antagónica in vitro de T. koningii, T. virens y T. harzianum sobre Fusarium oxysporum f sp. lycopersici patógeno del tomate en invernaderos plásticos. Horticultura Argentina 30:53-73.

Conles, M., A. Pérez, M. Blengini, I. Bochetto, M. Balzarini, C. Pinotti, and J. Muñoz. 2017. Antagonismo de aislamientos nativos de Trichoderma sobre Sclerotium cepivorum. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 3113. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Consolo, V., C. Mónaco, C. Cordo, and G. Salerno. 2012. Characterization of novel Trichoderma spp. isolates as a search for effective biocontrollers of fungal diseases of economically important crops in Argentina. World Journal of Microbiology and Biotechnology 28:1389-1398. https://doi.org/10.1007/s11274-011-0938-5.

Cook, R. J., and K. F. Baker. 1983. The Nature and Practice of Biological Control of Plant Pathogens. American Phytopathological Society. Pp. 539.

Cozzi, J., and L. Gasoni. 1995. Producción de biomasa de Trichoderma harzianum en distintos medios y condiciones de cultivo. Revista forestal Venezolana 1:28.

Crovo, V., and G. Clemente. 2015. Eficacia de fungicidas de síntesis y biológico en base a Trichoderma harzianum para controlar patógenos de semillas de soja. FAVE. Sección Ciencias agrarias 14:666-7719. https://doi.org/10.14409/fa.v14i2.5720.

Cueva, F. D. 2012. El control biológico como estrategia para apoyar las exportaciones agrícolas no tradicionales en Perú: un análisis empírico. Contabilidad y Negocios 7:81-100.

Cúndom, M. A., S. M. Maza, M. A. Mazzanti, S. A. Gutiérrez, and M. Couthino. 2002. Actividad antagónica in vitro de hongos saprófitos del departamento Capital, provincia de Corrientes, Argentina, contra Sclerotinia sclerotiorum. Fitopatología 37:133-141.

Dal Bello, G., C. Mónaco, and M. Sisterna. 1994. Efecto de Trichoderma spp. sobre el control del tizón de la plántula en trigo ocasionado por Bipolaris sorokiniana bajo condiciones de invernáculo. Fitopatologia Brasileira 19:394-400.

DeBach, P. 1964. Successes, trends, and future possibilities. Pp. 673-713 in P. DeBach (ed.). Biological Control of Insect Pests and Weeds. Reinhold, N.Y. Pp. 844.

De Candolle, A. P. 1815. Flore Française 6:1-662.

Durman, S., A. Méndez, and A. Godeas. 1999. Evaluación de Trichoderma spp. como antagonista de Rhizoctonia solani in vitro y como biocontrolador del damping-off de plantas de tomates en invernadero. Revista Argentina de Microbiología 31:13-18.

Esposito, E., and M. D. Silva. 1998. Systematics and environmental application of the genus Trichoderma. Critical Reviews in Microbiology 24:89-98. https://doi.org/10.1080/10408419891294190.

Etchegoyen, M. A., A. E. Ronco, and P. Almada. 2017. Occurrence and fate of pesticides in the Argentine stretch of the Paraguay-Paraná basin. Environmental Monitoring and Assessment 189:63. https://doi.org/10.1007/s10661-017-5773-1.

Fravel, D. 2005. Commercialization and implementation of biocontrol. Annual Review of Phytopathology 43:1-23. https://doi.org/10.1146/annurev.phyto.43.032904.092924.

Fernández, J. 2012. La producción de hortalizas en Argentina. Corporación del Mercado Central de Buenos Aires. Pp. 29.

Flores, C. R., S. G. Bejarano, N. M. Rueda, R. E. Rueda, and D. Flores Alzaga. 2014. Cepas de Trichoderma B-69; B-67 y B-72 seleccionadas por su actividad supresiva sobre la podredumbre vascular del tomate. Resumen XXXVII Congreso Argentino de Horticultura 33:57.

Ganuza, M. R., N. A. Pastor, J. Folguera, J. Andrés, M. M. Reynoso, M. Rovera, and A. M. Torres. 2016. Perspectiva de aplicación de bioformulado a base de Trichoderma harzianum ítem 3636 para el control de carbón de maní. Plant Disease 101:400-408.

Gasoni, L., N. Kahn, V. Yossen, J. Cozzi, K. Kobayashi, S. Babbitt, V. Barrera, and G. Zumelzú. 2008. Effect of soil solarization and biocontrol agents on plant stand and yield on table beet in Córdoba (Argentina). Crop Protection 27:337-342. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2007.06.004.

Goidánich, G. 1947. Revisione del genere Macrophomina Petrak. Specie tipica: Macrophomina phaseolina (Tassi) G. Goid. n. comb. nec M. phaseoli (Maubl.) Ashby. Annali della Sperimentazione Agaria 1:449-461.

Guerrero, R. 2016. Selección y efectividad del uso de aislamientos de Trichoderma spp. para el control del Cancro Bacteriano del tomate (Lycopersicum esculentum Mill.). Revista Amazónica Ciencia y Tecnología 6:9-20.

Gutiérrez Brower, J., A. Romero, and A. K. Bulak. 2013. Selección de cepas de Trichoderma spp. de suelos lateríticos (Misiones, Argentina) según su capacidad antagonista in vitro y multiplicativa en cultivo bifásico y evaluación de su tolerancia a fungicidas químicos de uso habitual en cultivos de la zona. Revista Argentina de Microbiología 45:219.

Grijalba, P. E., G. A. Devitto, E. R. Wright, M. V. López, and O. S. Delfino. 1992. Eficiencia antagónica “in vitro” y en invernáculo de Trichoderma koningii sobre Colletotrichum dematium var. truncata. Revista Facultad de Agronomía 13:157-162.

Haller, A. 1768. Historia stirpium indigenarum Helvetiae inchoata 1:250.

Hapon, M., P. Pizzuolo, G. Lucero, and J. Boiteux. 2010. Actividad biológica de metabolitos extracelulares producidos por aislados de Trichoderma spp. sobre Botrytis cinerea. Revista Argentina de Microbiología 42:213.

Harries, E., G. E. Mercado Cárdena, and L. Berruezo. 2017. Control biológico de Rhizoctonia solani por Trichoderma sp. aislados de suelos tabacaleros de Salta. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 361. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Howel, C. R. 2003. Mechanisms employed by Trichoderma Species in the biological control of plant diseases: The history and evolution of current concepts. Plant Disease 87:1-10. https://doi.org/10.1094/PDIS.2003.87.1.4.

Infante, D., B. Martínez, N. González, and Y. Reyes. 2009. Mecanismos de acción de Trichoderma frente a hongos fitopatógenos. Revista de Protección Vegetal 24:14-21.

Jaldo, A., and M. Delia. 2017. Un análisis de la producción y comercio internacional de cebolla: situación y perspectivas de la cadena de valor en Argentina. URL: http://hdl.handle.net/20.500.12123/1819.

Katinas L., D. G. Gutiérrez, M. Grossi, and J. Crisci. 2007. Panorama de la familia Asteraceae (=Compositae) en la República Argentina. Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica 42: 113-129.

Kogan, M. 1998. Integrated pest management: historical perspectives and contemporary developments. Annual Review of Entomology 43:243-270. https://doi.org/10.1146/annurev.ento.43.1.243.

Linneo C. 1753. Species Plantarum Sections I-III. Pp. 127.

Lolas, M., and C. Sandoval. 2013. Control biológico de enfermedades fungosas en diferentes hortalizas. En J. R. Montealegre y L. M. Pérez (eds.). Control biológico de enfermedades de las plantas en Chile. Universidad de Chile, Santiago, Chile. Pp. 79-85.

Lucero, G., P. Pizzuolo, and M. Hapon. 2008. Acción antagónica “in vitro” de Trichoderma sp. sobre Botrytis cinerea, responsable de la podredumbre gris de la vid. Revista Enología 1:4.

Lucero, G., P. Boiteux, A. Alvarado, M. Díaz, and M. Hapon. 2014. Biocontrol de Phytophthora capsici por antibiosis o competición con tres aislados de Trichoderma sp. Resúmenes del 3º Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, San Miguel de Tucumán, Argentina. Pp. 386. URL: https://tinyurl.com/w4ozbhk.

Maumary, R., E. Zaiser, and M. Cracogna. 2017. Biocontrol de Macrophomina phaseolina por cepas de Trichoderma sp. aisladas de soja del norte de Santa Fe. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 385. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Mazza de Gaiad, S. M., S. A. Gutiérrez de Arriola and M. A. Cúndom. 2003. Selection of Trichoderma spp. isolates against Rhizoctonia solani. Span. Journal of Agricultural Research 4:79-82. https://doi.org/10.5424/sjar/2003014-53.

Menéndez, A. B., and A. Godeas. 1998. Biological control of Sclerotinia sclerotiorum attacking soybean plants. Degradation of the cell walls of this pathogen by Trichoderma harzianum (BAFC 742). Mycopathologia 142:153-60. https://doi.org/10.1023/A:1006910707804.

Miralles, D., and F. González. 2010. El trigo en Argentina: Perspectivas ecofisiológicas del pasado, presente y futuro para aumentar el rendimiento. XVII Congreso de AAPRESID, La era del Ecoprogreso. Rosario, Santa fe, Argentina.

Mónaco, C., A. Pérelló, and M. C. Rollán. 1994. Ensayos in vitro del comportamiento antagónico de Trichoderma spp. frente a especies patógenas de la zona hortícola de La Plata, Argentina. Microbiología SEM 10:423-428.

Monroy, C., A. Cortés, D. Sicard, and H. Groot de Restrepo. 2005. Cytotoxicity and genotoxicity of human cells exposed in vitro to glyphosate. Biomédica 25:335-45. https://doi.org/10.7705/biomedica.v25i3.1358.

Montagna, M., and P. Collins. 2004. Efecto de un formulado comercial del herbicida glifosato sobre el cangrejo Trichodactylus borellianus (Crustacea, Decapoda: Braquiura). Revista de la Facultad de Bioquímica y Ciencias Biológicas 8:227-234. https://doi.org/10.14409/fabicib.v8i1.750.

Mukherjee, P. K., B. A. Horwitz, A. Herrera Estrella, M. Schmoll, and C. M. Kenerley. 2013. Trichoderma Research in the Genome Era. Annual Review of Phytopathology 51:105-29. https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-082712-102353.

Murillo, B. G., E. E. Guerrero, and S. R. Zapata. 2016. Manejo ecológico en frutilla aplicando Trichoderma sp. como promotor de crecimiento y controlador biológico de Botrytis cinérea. Avances en Energías Renovables y Medio Ambiente 20:09.37-09.44.

Nees, C. D. 1817. System der Pilze und Schwämme. Pp. 1-334.

Oddino, C. F. Giordano, J. Paredes, L. Cazón, J. Giuggia, and A. Rago. 2018. Efecto de nuevos fungicidas en el control de viruela del maní y el rendimiento del cultivo. Ab Intus - Facultad de Agronomía y Veterinaria 1: 9-17.

Paganelli, A., V. Gnazzo, H. Acosta, S. L. López, and A. E. Carrasco. 2010. Glyphosate based herbicides produce teratogenic effects on vertebrates by impairing retinoic acid signaling. Chemical Research in Toxicology 23:1586-1595. https://doi.org/10.1021/tx1001749.

Pearson, R., and A. Goheen. 1996. Plagas y Enfermedades de la Vid. The American Phytopathological Society. Ediciones Mundi-Prensa. Pp. 91.

Perello, A. E., C. I. Monaco, M. R. Simon, M. Sisterna, and G. Dal Belloa. 2003. Biocontrol efficacy of Trichoderma isolates for tan spot of wheat in Argentina. Crop Protection 22:1099-1106. https://doi.org/10.1016/S0261-2194(03)00143-1.

Perello, A. E., M. V. Moreno, C. Mónaco, M. R. Simón, and C. Cordo. 2009. Biological control of Septoria tritici bloth on wheat by Trichoderma spp. under field conditions in Argentina. BioControl 54:113-122. https://doi.org/10.1007/s10526-008-9159-8.

Perniola, O. S., S. Staltari, S. E. Chorzempa, M. M. Astiz Gassó, and M. C. Molina. 2014. Control biológico de Fusarium graminearum: utilización de Trichoderma spp. y biofumigación con parte aérea de Brassica juncea. Revista de la Facultad de Ciencias Agrarias 46:45-56.

Persoon, C. H. 1794. Disposita methodica fungorum. Neues Magazin für die Botanik 1:81-128.

Pimentel, D., L. McLaughlin, A. Zepp, B. Lakitan, T. Kraus, P. Kleinman, F. Vancini, W. John Roach, E. Graap, W. S. Keeton, and G. Selig. 1991. Environmental and economic effects of reducing pesticide use. Bioscience 41:402-409. https://doi.org/10.2307/1311747.

Pineda Insuasti, J. A., E. N. Benavides Sotelo, A. S. Duarte Trujillo, C. A. Burgos Rada, C. P. Soto Arroyave, C. A. Pineda Soto, C. A. Fierro Ramos, F. J. Mora Muñoz, E. Sulay, and S. E. Álvarez Ramos. 2017. Producción de biopreparados de Trichoderma spp: una revisión. ICIDCA. Sobre los Derivados de la Caña de Azúcar 51:47-52.

Pringsheim, N. 1858. Beiträge zur Morphologie and Systematik der Algen. 2. Die Saprolegnieen. Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik 1:284-306.

Rahman, A., M. F. Begum, M. Rahman, M. A. Bari, G. N. Ilias, and M. F. Alam. 2011. Isolation and identification of Trichoderma species from different habitats and their use for bioconversion of solid waste. Turkish Journal of Biology 35:183-194.

Reca, L. G., and G. H. Parellada. 2001. La agricultura argentina a comienzos del milenio: Logros y desafíos. Desarrollo Económico. Pp. 707-737. https://doi.org/10.2307/3456001.

Reznikov, S., G. R. Vellicce, V. González, V. De Lisi, A. P. Castagnaro, and L. D. Ploper. 2016. Evaluation of chemical and biological seed treatments to control charcoal rot of soybean. Journal of General Plant Pathology 82:273-280. DOI: 10.1007/s10327-016-o669-4. https://doi.org/10.1007/s10327-016-0669-4.

Rifai, M. A. 1969. A revision of the genus Trichoderma. Mycological Papers 116:1-56.

Rivera, M., and E. Wright. 2014. Control biológico de enfermedades de plantas en Argentina. En B. Wagner, M. Rivera, P. Mondino, J. Montealegre and Colmenárez (eds.). Control biológico de enfermedades de plantas en América Latina y el Caribe. Pp. 9-81.

Rodríguez, A. V., G. G. Cordes, F. B. Godoy, and J. R. Pasquini. 2017. Evaluación de aislamientos de Trichoderma spp. contra Sclerotium rolfsii y Sclerotinia minor bajo condiciones in vitro. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 318. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Rojas Molina F., and Williner V. 2013. First record of the non-indigenous mussel Limnoperna fortunei (Bivalvia, Mytilidae) as an epibiont of the crab Trichodactylus borellianus (Decapoda, Trichodactylidae). Crustaceana 86:682-692. https://doi.org/10.1163/15685403-00003183.

Rojo, G., M. Reynoso, M. Ferez, S. Chulze, and A.Torres. 2006. Biological control by Trichoderma species of Fusarium solani causing peanut brown root rot under field conditions. Crop Protection 26:549-555. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2006.05.006.

Rojo, G., M. Ferez, M. Reynoso, A. Torres, and S. Chulze. 2007. Effect of Trichoderma species on growth of F. proliferatiom and production of fumonisins, fusaproliferin and beauvericin. Mycotoxin Research 23:173-179. https://doi.org/10.1007/BF02946044.

Saccardo, P. A. 1880. Conspectus generum fungorum Italiae inferiorum nempe ad Sphaeropsideas, Melanconieas et Hyphomyceteas pertinentium systemate sporologico dispositorum. Michelia 2:1-38.

Saccardo, P. A. 1911. Notae mycologicae. Series XIII. Annales Mycologici 9:249-257.

Samuels, G. J., E. Lieckfeldt, and H. I. Nirenberg. 1999. Trichoderma asperellum, a new species with warted conidia, and redescription of T. viride. Sydowia 51:71-88.

Samuels, G. J., S. Dodd, B. Lu, O. Petrini, H. J. Schroers, and I. Druzhinina. 2006. The Trichoderma koningii aggregate species. Studies in Mycology 56:67-133. https://doi.org/10.3114/sim.2006.56.03.

Sánchez, A. D., V. Barrera, G. E. Reybet, and M. C. Sosa. 2015. Biocontrol con Trichoderma spp. de Fusarium oxysporum causal del “mal de almácigos” en pre y post emergencia en cebolla. Revista de la Facultad de Agronomía, La Plata 114:61-70.

Sánchez, S., and M. M. Gassó. 2017. Control biológico de R. solani en Lycopersicum esculentum con Trichoderma sp. en invernáculo. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 308. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Schliserman, P., and S. M. Ovruski, S. M. 2004. Incidencia de moscas de la fruta de importancia económica sobre Citrus aurantium (Rutaceae) en Tucumán, Argentina. Manejo Integrado de Plagas y Agroecología Costa Rica 72:52-61.

Schultz, H. 1936. Vergleichende Untersuchungen zur Ökologie, Morphologie und Systematik des "Vermehrungspilzes". Arbeiten der Biologischen Reichsanstalt für Land- und Forstwirtschaft 22:1-42.

Sharma, P., M. Sharma, M. Raja and V. Shanmugam. 2014. Status of Trichoderma research in India: A review. Indian Phytopathology 67:1-19.

Shoemaker, R. A. 1959. Nomenclature of Drechslera and Bipolaris, grass parasites segregated from 'Helminosporium'. Canadian Journal of Botany 37:879-887. https://doi.org/10.1139/b59-073.

Shoemaker, R. A. 1962. Drechslera Ito. Canadian Journal of Botany 40:809-836. https://doi.org/10.1139/b62-075.

Singh, D., and S. K. Mathur. 1974. S. rolfsii in seeds of bean from Uganda. Seed Science and Technology 2:481-483.

Stepin-Sytnik, E. V., M. C. Garay-Villalba, M. Maidana-Ojeda, and C. Cabral-Antúnez 2018. Insectos depredadores y parasitoides asociados al cultivo de soya (Glycine max L. Merrill, 1917), en el distrito Arquitecto Tomás Romero Pereira, Itapúa, Paraguay. Intropica 13:122-129. https://doi.org/10.21676/23897864.2611.

Stocco, M. C., C. I. Monaco, C. Abramoff, G. Lampugnani, G. Salerno, N. Kripelz, C. A. Cordo, and V. F. Consolo. 2016. Selection and characterization of Argentine isolates of Trichoderma harzianum for effective biocontrol of Septoria leaf blotch of wheat. World Journal of Microbiology and Biotechnology 32:49. https://doi.org/10.1007/s11274-015-1989-9.

Traglia, C., M. Vidal, J. Gortari, V. Rosenfeld, and A. Oviedo. 2018. Concentración económica en cadenas agroindustriales de Misiones, Argentina: yerba mate, té y mandioca. SaberEs 10:19-36.

Valetti, L., L. I. Cazón, and S. Pastor. 2017. Potencial de Trichoderma spp. como agente biocontrolador de cancrosis papirácea del manzano causada por Valsa ceratosperma. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 329. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Vázquez, M. A., E. Maturano, A. Etchegoyen, F. S. Difilippo, and B. Maclean. 2017. Asociación entre cáncer y exposición ambiental a glifosato. International Journal of Clinical Medicine 8:73-85. https://doi.org/10.4236/ijcm.2017.82007.

Vereschuk, M. L., A. C. López, A. S. Chelaliche, A. E. Alvarenga, E. Schegg E, G. A. Netter, M. F. Luna, and L. L. Villalba. 2017. Actividad antagónica de aislados de Trichoderma sp. endófitos de yerba mate (Ilex paraguariensis). Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 300. URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Viera, W., M. Noboa, J. Bermeo, F. Báez, and T. Jackson. 2018. Parámetros de calidad de cuatro tipos de formulaciones a base de Trichoderma asperellum y Purpuricillium lilacinum. Enfoque UTE 9:145-153. https://doi.org/10.29019/enfoqueute.v9n4.348.

Vinale, F., K. Sivasithamparam, E. L. Ghisalberti, R. Marra, S. L. Woo, and M. Lorito. 2008. Trichoderma-plant-pathogen interactions. Soil Biology and Biochemistry 40:1-10. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2007.07.002.

Vogrig, J. A., S. Sarrailhé, M. A. López Amaya, O. S. Correa, and M. S. Montecchia. 2017. Capacidad antagónica de cepas de Trichoderma nativas de suelos del noroeste Argentino contra Macrophomina phaseolina. Resumen 4° Congreso Argentino de Fitopatología. Asociación Argentina de Fitopatólogos, Mendoza, Argentina. Pp. 331 URL: https://tinyurl.com/scqx3xp.

Walsh, L. P., C. McCormick, C. Martin, and D. M. Stocco. 2000. Roundup inhibits steroidogenesis by disrupting steroidogenic acute regulatory (StAR) protein expression. Environmental Health Perspectives 108:769-776. https://doi.org/10.1289/ehp.00108769.

Weindling, R. 1934. Studies on a lethal principle effective in the parasitic action of Trichoderma lignorum on Rhizoctonia solani and other soil fungi. Phytopathology 24:1153-79.

Wells, H. D., D. K. Bell, and C. A. Jaworski. 1972. Efficacy of Trichoderma harzianum as a biological control for Sclerotium rolfsii. Phytopathology 62:442-47. https://doi.org/10.1094/Phyto-62-442.

Wollenweber, H. W. 1930. Fusaria Autographice Delineata 3:660-1100.

Woo, S. L., M. Ruocco, F. Vinale, M. Nigro, R. Marra, N. Lombardi, A. Pascale, S. Lanzuise, G. Manganiello, and M. Lorito. 2014. Trichoderma- based products and their widespread use in agriculture. The Open Mycology Journal 8:71-126. https://doi.org/10.2174/1874437001408010071.

Wright, E. R., R. Zapata, O. S. Delfino, M. V. López, and M. Senlle. 1988. Eficiencia in vitro de antagonistas de S. sclerotiorum y S. minor. Revista Facultad de Agronomía 9:119-116.

Zapata, R. L., S. R. Spivak, O. S. Filippini de Delfino, and M. C. Fabrizio. 1997. Control de la podredumbre de la endivia (Cichorium intybus L. var. foliosum) producida por Sclerotinia sclerotiorum mediante la aplicación de Trichoderma harzianum. Revista Facultad de Agronomía 17:151-155.

Trichoderma in Argentina: State of art

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Publicado

2020-04-02

Cómo citar

Amerio, N. S., Castrillo, M. L., Bich, G. A., Zapata, P. D., & Villalba, L. L. (2020). Trichoderma en la Argentina: Estado del arte. Ecología Austral, 30(1), 113–124. https://doi.org/10.25260/EA.20.30.1.0.945